Transport d'échantillons: Préparation chaîne de froid
5 Préparation de la chaîne de froid
Les boites isothermes disponibles dans le catalogue garantissent un maintien de température de +2 °C à +8 °C pendant 2 jours à une température ambiante de +28 °C. Pour de plus hautes températures ambiantes, les tests n’ont pas été réalisés.
5.1 Envoi de +2 °C à +8 °C avec des accumulateurs à eau de 0,6 L
S’il faut envoyer des échantillons à une température de +2 °C à +8 °C avec des accumulateurs à eau, voici la procédure :
- Préparer une boite triple emballage isotherme.
- Préparer les 4 accumulateurs préconditionnés :
- Les sortir du congélateur et les laisser dans un endroit à +20 °C, abrité du soleil.
- Après 15 minutes, vérifier la quantité de liquide présent dans les accumulateurs. Pour que les accumulateurs soient à la bonne température pour l’envoi, il faut qu’il y ait 5 cm d’eau visible dans le fond des accumulateurs quand ceux-ci sont placés verticalement. Lorsqu’on secoue les accumulateurs, on entend un bruit d’eau.
! S’il y a moins de 5 cm d’eau ou pas d’eau du tout, les accumulateurs sont trop froids et les échantillons risqueraient de geler au début du transport !
! S’il y a plus que 5 cm d’eau, les accumulateurs sont trop chauds et la température pourrait trop augmenter pendant le transport ! - Si après 15 minutes, les accumulateurs ne sont pas encore à bonne température, les laisser encore 15 minutes à l’abri du soleil et revérifier.
- Une fois les 4 accumulateurs à bonne température, les placer dans la boite isotherme.
- Placer les échantillons dans leurs emballages dans la boite.
- Refermer la boite isotherme.
6. Documentation
6.1 IATA : Catégorie A - UN2814
Exemples indicatifs de matières infectieuses relevant de la catégorie A sous n’importe quelle forme, sauf indication contraire
| Désignation exacte d’expédition et numéro ONU | Micro-organisme | Forme |
| UN2814 Matière infectieuse affecte l’homme | Bacillus anthracis | Cultures uniquement |
| Brucella abortus | Cultures uniquement | |
| Brucella melitensis | Cultures uniquement | |
| Brucella suis | Cultures uniquement | |
| Burkholderia mallei – Pseudomonas mallei – Morve | Cultures uniquement | |
| Burkholderia pseudomallei – Pseudomonas pseudomallei | Cultures uniquement | |
| Chlamydia psittaci – sources aviaires | Cultures uniquement | |
| Clostridium botulinum | Cultures uniquement | |
| Coccidioides immitis | Cultures uniquement | |
| Coxiella burnetii | Cultures uniquement | |
| Escherichia coli, producteur de vérotoxine | Cultures uniquement | |
| Francisella tularensis | Cultures uniquement | |
| Hantavirus provoquant une fièvre hémorragique avec syndrome rénal | ||
| Mycobacterium tuberculosis | Cultures uniquement | |
| Poliovirus | Cultures uniquement | |
| Rickettsia prowazekii | Cultures uniquement | |
| Rickettsia rickettsii | Cultures uniquement | |
| Shigella dysenteriae type 1 | Cultures uniquement | |
| Virus de la dengue | Cultures uniquement | |
| Virus de la fièvre hémorragique de la vallée du Rift | Cultures uniquement | |
| Virus de la fièvre hémorragique de Crimée-Congo | ||
| Virus de la fièvre d’Omsk | ||
| Virus de la fièvre jaune | Cultures uniquement | |
| Virus de la maladie de la forêt de Kyasanur | ||
| Virus de la variole | ||
| Virus de l’encéphalite à tiques | Cultures uniquement | |
| Virus de l’encéphalite équine de l’Est | Cultures uniquement | |
| Virus de l’encéphalite équine du Venezuela | Cultures uniquement | |
| Virus de l’encéphalite japonaise | Cultures uniquement | |
| Virus de l’encéphalite russe printemps-été | Cultures uniquement | |
| Virus de l’hépatite B | Cultures uniquement | |
| Virus de l’immunodéficience humaine | Cultures uniquement | |
| Virus de l’influenza aviaire hautement pathogène | Cultures uniquement | |
| Virus de Marburg | ||
| Virus du Nil occidental | Cultures uniquement | |
| Virus Ebola | ||
| Virus flexal | ||
| Virus Guanarito | ||
| Virus Hantaan | ||
| Virus Hendra | ||
| Virus Herpès B | Cultures uniquement | |
| Virus Junin | ||
| Virus Lassa | ||
| Virus Machupo | ||
| Virus monkeypox | ||
| Virus Nipah | ||
| Virus rabique | Cultures uniquement | |
| Virus Sabia | ||
| Yersinia pestis | Cultures uniquement |
Adapté de Guidance on regulations for the transport of infectious substances 2021-2022. Geneva: World Health Organization; 2021. Licence: CCBY-NC-SA3.0IGO
6.2 Exemple de déclaration de marchandises dangereuses (ou DGD)
6.3 Exemple de certificat de don
6.4 Exemple de lettre de transport aérien (LTA) ou Airway Bill
6.5 Etiquette Pasteur
Disponible à l’adresse suivante :
https://www.pasteur.fr/fr/file/3157/download?token=Evu6jsP5
Quel que soit le mode de transport, remplissez et apposez une étiquette comme ci-dessus sur l'emballage extérieur de tous les envois destinés aux Centres de référence nationaux de l'Institut Pasteur.
Expéditeur :
- Nom
- Hôpital/Laboratoire/Unité
- Adresse
- Code postal
- Ville
- Pays
- Numéro de téléphone
- Numéro de fax
Conditions de stockage : choisissez une option
- Température ambiante
- + 4 °C
- -20 °C
Destinataire :
- Institut Pasteur
- Laboratoire national de référence de ___________________________
- A l'attention de ___________________________________________
- Adresse : déjà ajoutée
Références
1. Guidance on regulation for the transport of infectious substances 2021-2022/WHO
https://apps.who.int/iris/handle/10665/339825
2. Exempt Human/Animal specimens shipping guidelines. Retrieved from :
https://www.cancertrials.ie/wp-content/uploads/2018/05/DHL_Exempt-Human-Animal-Specimen-Customer-2015.pdf
3. IATA document. Dangerous Goods Regulations (DGR). 62nd Edition. 2021. Retrieved from